實驗技術|蛋白免疫印跡WB（上）
日期：2019-03-13 11:19:12
Western Blot
對于任何一個科研菌都不陌生。
BUT
為甚么別人的實驗,時間短跑膠快？
除了實驗精細化操作,
當然也離不開選擇最佳的試劑，
和對關鍵實驗步驟的優化設計。
科研就像賽跑，你比別人跑的快，就比別人多發幾篇SCI~
陽春三月，咱們從WB說起……
蛋白免疫印跡（WB）是基于抗原抗體的特異性結合作用，以檢測復雜樣品中的某種蛋白，并對其進行半定量分析的一種方法。
主要用于靶標蛋白特異性表達的定性或半定量分析，蛋白與蛋白或蛋白與DNA相互作用的后續分析，以及蛋白修飾的鑒定分析。
1.1 蛋白樣品來源
用于WB的蛋白樣本可以是可溶性蛋白液，細胞組織裂解液，及免疫沉淀蛋白。對于不同樣品蛋白上樣量存在區別，純蛋白建議不超過100 ng，細胞組織裂解液10-40 μg。
1.2 蛋白樣品制備
一般從動植物組織或細胞中提取復雜蛋白成分，在提取過程中應遵守如下原則：
① 結合蛋白特性采用合適的提取方法；
② 采用合適的方法最大限度提取靶標蛋白；
③ 保持低溫操作，并加入蛋白酶抑制劑，防止蛋白降解；
④ 選擇合適的蛋白裂解液，以維持蛋白可溶性狀態；
⑤ 蛋白樣品-80℃低溫保存或變性后保存，避免反復凍融，并盡快檢測。
✪ 細胞樣本蛋白制備
➥待細胞匯合度達到80%，取出培養皿（10 cm），此時細胞生長至對數期，活性良好。棄去培養液，加入預冷的PBS緩沖液洗滌3次，置于冰上。
➥配制含蛋白酶抑制劑的裂解液，常用蛋白酶抑制劑見下表，需根據實驗要求選擇合適的蛋白酶抑制劑。最常用的蛋白酶抑制劑為PMSF（工作濃度1 mM），劇毒，使用時應注意自我防護，其在水中半衰期極短，故在臨用前加入。
➥加入1 mL含蛋白酶抑制劑的蛋白裂解液于10 cm培養皿中，輕輕晃勻后，置于冰上裂解15-30 min。
➥用干凈的細胞刮迅速刮取細胞于一側，并將含細胞碎片的裂解液轉移至1.5 mLEp管中，置于冰上。此時應避免氣泡產生。
注：收集的細胞亦可通過超聲破碎進行充分裂解。將超聲探頭置于樣本裂解液中部，但不觸碰管壁或管底，進行超聲。
➥于4℃，12000 rpm離心10-15 min。
➥輕輕取出EP管，用槍頭吸去上層上清于新的EP管中，注意不要吸到上層漂浮的脂質等雜質，并置于冰上備用。
➥經蛋白定量后，加入適量6×Sample loading buffer 95℃煮樣5 min，12000 rpm離心30 s，-20℃保存。
✪ 組織樣本蛋白制備
➥獲取新鮮組織樣本，并用生理鹽水或PBS洗滌干凈，用潔凈的剪刀將組織剪碎至合適大小?？刹捎?-2 mL勻漿器置于冰上進行組織勻漿，或加入液氮進行研磨。因組織塊相對不易破壞，且在勻漿過程中存在摩擦產熱，推薦采用液氮研磨。
➥配制含蛋白酶抑制劑的裂解液。
➥加入適量含蛋白酶抑制劑的裂解液（50 mg/500 μL）于研磨后的組織樣本中，將離心管置于冰上裂解15-30 min，期間進行間斷混勻，以充分裂解。
注：為確保組織細胞充分裂解，建議進行超聲破碎。調節超聲儀至適宜頻率與功率（超聲功率不宜過大，并設置超聲間歇，以防止超聲探頭過度產熱），將超聲探頭置于樣本裂解液中部，但不觸碰管壁或管底，進行冰浴超聲。
➥于4℃，12000 rpm離心10-15 min。
➥輕輕取出EP管，用槍頭吸去上層上清于新的EP管中，注意不要吸到上層漂浮的脂質等雜質，并置于冰上備用。
➥經蛋白定量后，加入適量的6×Sample loading buffer 95℃煮樣，12000 rpm離心30 s，-20℃保存。
1.3 蛋白裂解液的選擇
蛋白裂解液的主要成分及其作用如下：
1. 緩沖體系
一定pH范圍的緩沖體系，為蛋白提供了一個穩定環境，并增加蛋白溶解度。常用近似生理pH狀態的Tris-HCl或HEPES緩沖體系，pH7.4。Tris-HCl（pKa=8.1）pH緩沖范圍為7.0-9.2，其對溫度較為敏感。HEPES（pKa=7.55）pH緩沖范圍為6.5-8.5。
2. 鹽離子
在適當鹽離子濃度下，保持蛋白溶解狀態。選擇近似生理狀態下的150 mM的NaCl，不會對破壞蛋白以及蛋白間相互作用產生影響。
3. 螯合劑
螯合金屬離子，以防止蛋白提取物過于黏稠，導致溶解度下降。另外，螯合劑亦可與某些酶發生相互作用，以抑制酶活性。
4. 還原劑
加入一定量的還原劑保護蛋白質上自由的巰基不被氧化，從而避免蛋白質的聚集或變性。常用β-巰基乙醇或二硫蘇糖醇（DTT），后者還原能力強于前者。β-巰基乙醇具有揮發性，加入緩沖液中以后較短時間內會被氧化，會對蛋白活性產生影響，其使用濃度為5-20 mM/L。而DTT具有更強的還原能力，且在氧化以后能夠形成穩定的分子內二硫鍵，不會影響蛋白巰基，使用濃度相對偏低為0.5-1 mM/L。長期保存建議使用DTT，但DTT溶液不穩定，需要現配現用。
5. 去垢劑
去垢劑即表面活性劑，其通過分子結構特征，表面活性劑分子的疏水段插入膜的磷脂雙分子層，而改變其通透性，最終破壞膜結構。因此，表面活性劑的強度直接決定了裂解細胞的強度。裂解液中所使用的表面活性劑主要可分為兩大類：陰離子型表面活性劑和非離子型表面活性劑。常用表面活性劑如下：
十二烷基硫酸鈉（SDS）：陰離子表面活性劑，具有很強的破壞力，基本可以使所有的蛋白溶解，并破壞其天然構象結構。SDS與蛋白分子以1.4:1的比例進行結合，可以有效的覆蓋蛋白本身所帶的電荷情況。SDS的臨界膠束溫度較高，在低溫時即會發生沉淀，且在鉀鹽存在時，沉淀效果會更明顯。另外溶液離子強度越強，會降低離子型去污劑的臨界膠束濃度，使得這種蛋白溶解效果更強。
脫氧膽酸鈉（NaDOC）：也是一種離子型表面活性劑，作用較SDS弱。
Triton X-100：是一種非離子型表面活性劑?？梢云茐牡鞍踪|與脂質間的相互作用，但并不使蛋白變性，也不破壞蛋白與蛋白間的連接，能夠保留蛋白質的天然構象。其具有較低的臨界膠束濃度，在64℃下，可觀察到兩相分離。
NP-40：非離子型表面活性劑，對核膜的破壞作用較弱，與蛋白結合力強，可確保蛋白的充分溶解和結構穩定，特別適用于膜蛋白非變形條件下的溶解。
Tween 20：溫和非離子型表面活性劑，蛋白溶解能力較弱，也不會破壞蛋白結構，并不作為蛋白裂解液的常見成分。
去污劑的選擇取決于所要提取蛋白的性質與實驗目的。需要充分裂解細胞，并溶解蛋白，對于提取后蛋白的狀態（變性還是保留天然狀態）都是需要考慮的問題。
6. 蛋白酶抑制劑
由于在蛋白提取過程中，細胞和組織被破壞，大量蛋白酶被釋放。除了保持在低溫條件下操作以抑制蛋白酶活性外，還應加入適量蛋白酶抑制劑以抑制蛋白酶的活性，防止目的蛋白的降解。常用蛋白酶抑制劑如下表：
為了對樣品中的目的蛋白進行相對定量，需要對樣品間的總蛋白量進行檢測。在總蛋白含量一定的情況下，體現目的蛋白的表達差異。常用化學定量方法如下：
最常使用的蛋白定量方法是BCA法和Bradford法。但當所使用裂解液中含有高濃度去垢劑時，推薦使用BCA法定量蛋白。
2.1 Bradford法標準曲線的繪制
1.標準蛋白質溶液配制：
10 mg/mL牛血清白蛋白（BSA）標準品。準確稱取0.05 g牛血清白蛋白，溶于5 mL PBS中，即為10 mg/mL牛血清白蛋白。
2.考馬斯亮藍G-250染色液配制：
稱取50 mg考馬斯亮藍G-250，溶于25 mL 90%乙醇中，加入85%的磷酸50 mL，最后用純水定容到500 mL，考馬斯亮藍染色液需避光保存。
3.稀釋待測蛋白：
將蛋白稀釋三種不同梯度的濃度10倍，20倍，40倍。
4.稀釋標曲：
將標準品稀釋8種不同濃度梯度：
| 濃度梯度 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 |
| 濃度（mg/mL） | 0 | 0.05 | 0.075 | 0.1 | 0.15 | 0.2 | 0.3 | 0.4 |
5.將稀釋好的標曲和樣品各取20 μL按順序依次加入到酶標孔條中，然后再依次加入G250染色液180 μL，混勻。
6.在酶標儀595 nm處測定吸光值，根據吸光值做出標準曲線，并根據標準曲線計算蛋白濃度。
2.2 BCA檢測法
1.根據蛋白數量，按50:1（V/V）的BCA試劑A與B配置BCA工作液，室溫24 h內穩定；
2.溶解標準品，使終濃度為0.5 mg/mL。所用溶劑與樣品所用溶劑相同；
3.將標準品按照0，1，2，4，8，12，16，20 μL體積加入到酶標板中，并加標準品稀釋液補足到20 μL；
4.向個孔中加入200 μL BCA工作液，于37℃放置30 min；
5.酶標儀檢測562 nm處吸光度值；
6.根據繪制的標準曲線計算出樣品蛋白濃度。
3.1 蛋白樣品制備
變性蛋白，破壞蛋白三級結構，暴露抗原表位，便于抗體結合與后續檢測。將定量后的蛋白加入等體積2×Sample loading buffer 或1/5體積6×Sample loading buffer，于95℃加熱煮沸5 min。
對于膜蛋白，由于高溫會使得其聚集沉淀，在37℃處理30 min即可。
6×Sample loading buffer 配方如下：
6%Tris（pH6.8）(V/V)
4%SDS（W/V）
0.2%溴汾藍（W/V）
20%甘油（V/V）
9%DTT（V/V）
● 注意事項：
蛋白溶液上樣量以10-40 μg/孔為宜，避免上樣量超載，造成拖尾。
本期給大家帶來WB前三節的介紹
~下期干貨繼續噢~
1.蛋白樣品準備
2.蛋白定量
3.上樣
4.凝膠電泳
5.轉膜
6.封閉
7.孵育一抗
8.孵育二抗
9.顯影
10.常見問題
—未完·待續—
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